- Nome del prodotto: Tester del piede 37370
- Numero d'ordine: tlyon000396
- Marca: Ugo Italia
Se ritieni che le informazioni sul prodotto siano inesatte, non esitare a correggerle; Per richieste su categorie correlate e prodotti di marca, non esitate a contattarci37370- Tester del piede
Il tester plantare è utilizzato per misurare la risposta dei roditori alla stimolazione termica infrarossa. Concentrare la sorgente luminosa infrarossa sul fondo del piede dell'animale, premere l'interruttore, attendere che l'animale ritiri l'artiglio della prova e lo strumento registrerà automaticamente l'intensità e la durata della luce infrarossa. I dati sperimentali saranno visualizzati sullo schermo LCD e possono anche essere importati in un'unità USB o in un computer tramite un cavo USB.
Anche se gli esperimenti di pain tail flick e piastra fredda calda sono metodi classici di misura per la soglia di calore del dolore acuto, e questi due esperimenti sono ancora utilizzati nella ricerca farmacologica, hanno alcune limitazioni. Entrambi i metodi non sono stati applicati nello studio delle risposte comportamentali all'iperalgesia.
Il foot test rappresenta un metodo sperimentale avanzato che combina i vantaggi di tutti i test di allergia al dolore. Durante l'esperimento, gli animali in esame non saranno trattenuti; Inoltre, la registrazione dei dati sperimentali viene automaticamente rilevata dallo strumento e la sua accuratezza non sarà influenzata dai fattori del personale.
L'ultimo modello ha uno speciale filtro che può tagliare lo spettro visibile, che può interferire con gli esperimenti sugli animali e influenzare i risultati sperimentali. Se l'ambiente sperimentale non è corretto, c'è un circuito di feedback in grado di rilevare errori sperimentali. Evitare efficacemente di condurre esperimenti nell'ambiente sbagliato.
I dati vengono visualizzati sul pannello frontale e possono essere trasferiti al computer tramite USB. Dispositivi di archiviazione USB e software sono inclusi nel pacchetto accessori standard.
Recentemente, Ugo Basile ha lanciato il dispositivo di ritenuta per ratti Durham, che può essere utilizzato in combinazione con un tester del piede e può essere utilizzato anche per testare la nevralgia trigeminale nella mascella inferiore dei ratti
caratteristica
vantaggio
Lo strumento registra automaticamente il tempo di retrazione dell'artiglio
Non ci saranno errori causati da fattori umani
Dotato di interfaccia USB e software inclusi nella configurazione
Può lavorare in modo indipendente o connettersi a un computer per l'uso
La scatola degli animali può essere regolata in modo appropriato (fino a 12 topi possono essere ospitati)
Ottimizzare lo spazio di attività di topi e ratti in base alle loro dimensioni
Specifiche:
Tabella di confronto dei valori di intensità di stimolazione (valori di radiazione termica infrarossa) del tester plantare (unità: mW/cm2)
Intensità dello stimolo
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
99
Valore standard della radiazione
21±1
67±10
103±10
135±7
165±7
190±1
219±7
245±7
270±10
295±10
317±20
Comando:
Tasto soft
Trasferimento dati:
Dotato di memoria flash
Lettura dei dati:
Schermo LCD
Alimentazione elettrica:
universal mains 85-264 VAC, 50-60Hz
Stampa:
Stampante termica (da acquistare separatamente)
temperatura di funzionamento
15° - 30° C
inizio
Interruttore della sorgente luminosa infrarossa
Livello sonoro:
< 70 dB
Intensità della luce infrarossa:
Regolabile tra i livelli 01-99
Calibrazione:
Radiometro a infrarossi
Tempo di reazione:
Visualizzato sullo schermo LCD; Risoluzione di 0,1 s
Collega computer:
Connettore DELTA a 9 pin Fare riferimento al manuale di istruzioni 3.5
Lampadina a infrarossi:
Specifiche:
Copertura animale:
Peso netto:
Peso lordo:
Specifiche di imballaggio:
Halogen "Bellaphot", Mod. 64607 OSRAM, 8V-50W
85 x 40 x 35 cm
3, ogni 20x20x14 (h) cm
13,0kg
Circa 27,5 kg
109 x 53 x 55 cm
recinzione:
37300
Radiometro termico a infrarossi
57145
Micro stampante
37000-145:
Stampante integrata su pannello
37400-305:
M-S 085:
E-HR 002:
37370-278:
10 rotoli di carta da stampa termica (larghezza carta 58 mm, diametro rotolo carta 30 mm)
Sostituire la gabbia sperimentale
Sostituire la lampadina
Componenti sperimentali supplementari, compresi pannelli di vetro e sistemi di ritenuta per animali
37100
Dispositivo di ritenuta del ratto per la prova della nevralgia trigeminale nella mascella inferiore
riferimenti
metodo
- D.C. Yeomans & H.K. Proudfit: “Characterization of the Foot Withdrawal Response to Noxious Radiant Heat in the Rat” Pain 59: 85-97, 1994.- K.M. Hargreaves, R. Dubner, F. Brown, C. Flores and J. Joris: "A New and Sensitive Method for Measuring Thermal Nociception in Cutaneous Hyperalgesia." Pain 32: 77-88, 1988.Letteratura che menziona i prodotti UB- V. Vacca et alia: “Botulinum Toxin A Increases Analgesic Effects of Morphine, Counters Development of Morphine Tolerance and Modulates Glia Activation and μ Opioid Receptor Expression in Neuropathic Mice” Brain, Behav and Immunity 32: 40-50, 2013- A. Finley et alia: “Sphingosine 1-Phosphate Mediates Hyperalgesia via a Neutrophil-Dependent Mechanism” PLoS ONE 8(1): e55255, 2013- J. Donnerer et alia: “The Pain Pathway in the Rat following Noxious Thermal Stimulation: Effect of Morphine on pERK1/2 and TRPV1 at the Dorsal Horn Level, and on Hyperalgesia” Pharmacology 92: 32-38, 2013- M. Arai et alia: “The miRNA and mRNA Changes in Rat Hippocampi after Chronic Constriction Injury”Pain Medicine 14 (5): 720-729, 2013- P.J. Austin et alia: “G. Chronic Constriction of the Sciatic Nerve and Pain Hypersensitivity Testing in Rats” JoVE 61, e3393, doi:10.3791/3393, 2012 http://www.jove.com/video/3393/chronic-constriction-sciatic-nerve-pain-hypersensitivity-testing- H.N. Kim et alia: “Electroacupuncture Inhibits Phosphorylation of Spinal Phosphatidylinositol 3-kinase/Akt in a Carrageenan-induced Inflammatory Rat Model” Brain Res. Bulletin 87 (2-3): 199-204,2012- D. Piomelli et alia: ”Anandamide suppresses pain initiation through a peripheral endocannabinoid mechanism” Nature NSC, 2010- C.B. Vaegter et alia: ”Sortilin Associates with Trk Receptors to Enhance Anterograde Transport and Neurotrophin Signaling” Nature NSC, 2010- O. Ortiz et alia: “Associative Learning and CA3–CA1 Synaptic Plasticity Are Impaired in D1R Null,Drd1a-/- Mice and in Hippocampal siRNA Silenced Drd1a Mice” J. Neuroscience 30 (37): 12288-12300,2010- M. Rosemann et alia: “Microphthalmia, Parkinsonism, and Enhanced Nociception in Pitx3416insGMice” Mamm Genome 21: 12-27, 2010- Mark J. Field et alia: “Detection of Static and Dynamic Components of Mechanical Allodynia in Rat Models of Neuropathic Pain: Are They Signalled by Distinct Primary Sensory Neurones?” Pain 83: 303-311, 1999- Fred Lembeck: “Epibatine: High Potency and Broad Spectrum Activity on Neuronal and Neuromuscular Nicotinic Acetylcholine Receptors” Naunyn-Schmiedeberg’s Arch. Pharmacol. 359:378-385, 1999- Hartmut Buerkle et alia: “Experimental Arthritis in the Rat Does Not Alter the Analgesic Potency of Intrathecal or Intraarticular Morphine” Anesth. Analg. 89: 403-408, 1999.- F.G. Garrett, P.L. Durham et alia: “Validation of a Novel Rat-Holding Device for studying heat- and mechanical-Evoked Trigeminal Nocifensive Behavioral Responses” J. Orofacial Pain, 26 (4): 336- 344, 2012- F.G. Garrett, P.L. Durham et alia: “Development of a novel device for measuring withdrawal latency by thermal stimulation in rodent facial pain models using the Hargreaves Plantar Apparatus” Poster presented at SFN 2010